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活细胞高分辨率显微实时成像技术优势

更新时间:2025-08-13      点击次数:45

活细胞高分辨率显微实时成像技术通过突破光学衍射极限,实现了对活细胞动态过程的纳米级观测,其核心优势体现在分辨率提升、动态追踪能力、低光毒性设计、多模态整合及智能化分析五个方面,具体如下:


一、分辨率突破:从微米级到纳米级的跨越

传统光学显微镜受阿贝衍射极限限制,空间分辨率约200nm,难以观察亚细胞结构(如核孔复合体、肌动蛋白纤维等)。而活细胞高分辨率显微实时成像技术通过以下技术实现分辨率飞跃:

STED显微镜:利用受激发射损耗原理,将XY轴分辨率压缩至25nm,Z轴达80nm,可直接观察线粒体嵴、突触囊泡等结构。

SIM技术:通过结构化照明编码高频信息,实现约100nm横向分辨率,结合稀疏解卷积算法(如Sparse-SIM)可进一步提升至60nm,且成像速度更快。

光片显微镜:采用薄光片照明,仅焦平面被激发,减少光毒性同时实现高分辨率(如Viventis LS系列光片厚度仅1.5-6μm),适合长期观察光敏样本(如胚胎、类器官)。


二、动态追踪:从静态快照到连续电影

活细胞成像的核心需求是实时记录细胞形态、运动及分裂的动态过程。该技术通过以下创新实现这一目标:

高速成像:Elyra 7 with Lattice SIM2系统在Burst模式下可达255fps,可捕捉离子通道开闭(时间尺度≤10μs)、囊泡融合等瞬时事件。

长时间观测:海森结构光显微镜(Hessian-SIM)通过低光子剂量设计,实现1小时连续超分辨成像(每秒188帧),或10分钟内采集18万张超高分辨率图像,且基本无光漂白。

三维成像:SIM2 Leap模式将Z轴采集速度提升3倍,结合自适应光学补偿像差,可实时记录细胞分裂中染色体分离、胞质分裂等三维动态过程。


三、低光毒性:维持细胞活性的关键

高强度激光易导致荧光分子光漂白和细胞光损伤,限制长时间观测。该技术通过以下策略降低光毒性:

低能量照明:Hessian-SIM使用光子剂量仅为传统结构光显微镜的1/10,光照度低于共聚焦显微镜3个数量级,实现100Hz超高分辨率成像下连续采样10分钟无光漂白。

脉冲激光技术:780nm脉冲光纤激光系统通过低占空比设计,将单像素成像时间缩短至200微秒,同时抑制光漂白,实现亚毫秒时间分辨与亚微米空间分辨的力学成像。

光片照明:Viventis LS系列光片显微镜仅照亮焦平面,减少非焦平面光暴露,适合对光敏感样本(如卵子、胚胎)的长期成像。


四、多模态整合:从单一结构到系统级观测

细胞功能依赖多细胞器协同,该技术通过多模态整合实现系统级观测:

多通道成像:Elyra 7系统配备4根固体激光器(405nm、488nm、561nm、642nm)和高灵敏度sCOMS双相机,可同时标记线粒体(MitoTracker)、微管(Tubulin)和核(DAPI),实现多色超分辨成像。

力学与形态耦合:布里渊显微成像通过非接触式测量细胞力学性质(如弹性模量),结合荧光成像揭示斑马鱼胚胎中细胞外基质与腔体的力学差异,为力学生物学提供新工具。

环境控制:系统集成活细胞培养装置,可精确控制温度、湿度、CO₂浓度(如5% CO₂、37℃),维持细胞生理状态,支持长时间动态观测。


五、智能化分析:从数据到知识的转化

海量成像数据需高效分析,该技术通过以下手段实现智能化:

算法重建:PCA-SIM算法通过主成分分析实现照明参数快速自适应补偿,在低信噪比下仍能重建高质量超分辨图像,处理速度比传统COR方法快20倍。

深度学习:DPA-TISR神经网络模型结合相位空间对齐技术,提升活细胞长时间成像的空间分辨率,同时量化成像结果的不确定性,为分析细胞骨架、溶酶体和线粒体相互作用提供可靠工具。

自动化分析:配套软件支持图像采集、处理、分析和量化,可自动追踪细胞迁移轨迹、计算分裂周期时长,甚至识别细胞形态异常(如凋亡小体形成)。


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